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饲养管理

实验动物的给药途径

2016年08月16日 浏览量: 评论(0) 来源:《基础动物实验技术与方法》 作者:师长宏 冯秀亮 张海 责任编辑:admin
摘要:实验动物的给药途径包括:呼吸道给药、皮肤给药、脊髓腔内给药、小脑延髓池给药、脑内给药、直肠内给药等

1.呼吸道给药

以粉尘、气体及蒸汽或雾等状态存在的药物或毒气,均需要通过动物呼吸道给药,如一般实验给动物乙醚做吸入麻醉;给动物吸一定量的氨气、二氧化碳等观察呼吸和循环等变化,给动物定期吸入一定量的二氧化硫,锯末雾烟等可造成慢性气管炎动物模型等,特别在毒物学实验中应用更为广泛。

2.皮肤给药

为了鉴定药物或毒物经皮肤的吸收作用、局部作用、致敏作用和光感作用等,均需要采用经皮肤给药方法。如家兔和豚鼠常采用背部一定面积的皮肤脱毛后,将一定的药液涂在皮肤上,药液经皮肤吸收。

3.脊髓腔内给药

此法主要用于椎管麻醉或抽取脑脊液。

再用75%酒精将碘酊擦去。在兔背部髂骨脊连线之中点稍下方模动第七腰椎间隙(第七腰椎与第一骶骨之间),插入腰揭穿刺针头。当针达到椎管内时(蛛网膜下腔),可见到兔的后肢跳动,即证明穿刺针头已进入椎管,这时不要再向下刺,以免损伤脊髓。固定好针头。即可将药物注入。

4.小脑延髓池给药

此种给药都是在动物麻醉情况下进行的,而且多用于大动物如犬等,小动物很少采用,将犬麻醉后,使犬头尽量向胯部屈曲,用左手摸到其第一颈椎上方的凹陷(枕骨大孔)固定位置,右手取7号钝针头(将针头尖端磨钝),由此凹陷的正中线上,顺平行犬的方向,小心地插入小脑延髓池。当针头正确刺入延髓池时,注射者会感到针头再向前穿时无阻力;同时可以听到很轻的声音,即表示针头已穿过硬脑膜进入小脑。注射药物前,先抽出一些脑脊髓,抽量可根据实验需要注入多少药液决定,即注入多少,抽取多少,以保持原来脑脊腔里的压力。

5.脑内给药

此法常用于微生物学动物实验,将病原体等接种被检动物的脑内,然后观察各种变化。小鼠脑内给药时,选套有塑料管,针尖露出2mm深的51/2针头,由鼠正中额部刺入脑内,注入药物或接种药,给豚鼠、兔、犬等进行脑内注射时,须先用穿颅钢针穿透颅骨,再用注射器针头刺入脑部,再缓慢注入被检物。注射速度一定要慢,避免引起颅内压急骤升高。

6.直肠内给药

此种给药方法常用于动物麻醉。家兔直肠内给药时,取灌肠用的胶皮管或用14号导尿管代替,在胶皮管或导管头涂上凡士林,由助手使兔蹲卧于桌上,以左臂及左腋轻轻按住兔头及前肢,以左手拉住兔尾,露出肛门,并用右手轻提后肢,实验者将橡皮管插入家兔肛门,深度7~9cm,如为雌性动物,注射勿误插入阴道(肛门紧接尾根)橡皮管插好后,将注射器与橡皮管套紧,即可灌注药液。

7.关节腔内给药

此种方法常用于关节炎的动物模型复制,兔给药时,将兔仰卧于兔固定台上,剪去关节部被毛,用碘酒或酒精消毒,然后用左手从下方和两旁将关节固定,把皮肤稍移向一侧,在膑韧带附着点处上方约0.5cm进针。针头从上前方向下后方倾斜刺进,直至针头遇到阻力变小,然后针头稍后退,以垂直方向推到关节腔中,针头进入关节腔时,通常可有好像刺破薄膜的感觉,表示针头已经进入膝关节内,即可注入药液。

常用实验动物的最大给药量和使用针头规格见下表。

常用实验动物的最大给药量和使用针头规格(单位:药量ml、针头号)

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